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干血斑基因组DNA提取试剂盒(磁珠法)图片
产品货号:
WH0119
中文名称:
干血斑基因组DNA提取试剂盒(磁珠法)
英文名称:
Magnetic Blood Spots DNA Extraction Kit
产品规格:
50次|200次|1000次
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价
本试剂盒采用具有独特分离作用的磁珠和独特的缓冲液系统,从干血斑中分离纯化高质量基因组DNA。独特包埋的磁珠,在一定条件下对核酸具有很强的亲和力,而当条件改变时,磁珠释放吸附的核酸,能够达到快速分离纯化核酸的目的。整个过程安全、便捷,提取的基因组DNA片段大,纯度高,质量稳定可靠,尤其适合高通量工作站的自动化提取。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。


  • 简便快捷:1h内即可获得超纯的基因组DNA。
  • 高通量:可整合移液法自动化仪器和磁棒法自动化仪器进行高通量提取实验
  • 安全无毒:无需酚/氯仿等试剂
  • 纯度高:获得的DNA纯度高,可直接用于芯片检测、高通量测序等实验。



组分50次200次
缓冲液GAS25mL100mL
缓冲液GHC20mL80mL
去蛋白液PD120mL2×240mL
漂洗液PWB15mL50mL
Proteinase K1mL3×1mL
磁珠悬浮液G0.5mL2×1mL
洗脱缓冲液TBC15mL30mL

储存条件:室温(15~25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2~8℃。2~8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,必要时可在37℃水浴中孵育10min,以溶解沉淀。


  • 本产品适用于手工提取或自动化仪器整合。
  • 自备试剂:异丙醇,乙醇
  • 若缓冲液GAS、缓冲液GHC中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。



使用前请先在缓冲液GHC中加入异丙醇,漂洗液PWB中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶子上的标签。

一、手工操作步骤
  • 样本处理:向1.5mL离心管中加入3~10片直径为3mm的干血斑样品,加入200~400μL的缓冲液GAS和15μL Proteinase K溶液。
    干血斑片数缓冲液GAS
    3片200μL
    5片300μL
    10片400μL

  • 涡旋震荡10sec混匀后,放入预热至75℃的恒温震荡器中,900rpm恒温震荡裂解45min。
    注意:当样本数目比较大时,可以将缓冲液GAS和Proteinase K按比例预先混合,混合后放置不要超过1h。
  • 在上一步样品裂解期间,向新的离心管中加入10μL磁珠悬浮液G,600μL缓冲液GHC(使用前请确认是否已加入异丙醇),抽打混匀或振荡混匀10sec。
    注意:当样本数目比较大时,可以将磁珠悬浮液G,缓冲液GHC按比例预先混合并抽打或振荡混匀20sec,混合后每个样本用量为610μL。
  • 样品裂解后,将步骤2中离心管短暂离心后室温放置2min,并将裂解液上清转移至步骤3中的离心管,然后将其放入恒温振荡器,室温900rpm震荡10min。
    注意:尽量不要吸到滤纸片,否则会影响到磁珠与核酸结合,导致得率降低。
  • 将离心管放置于磁力架上静置1min,待磁珠完全吸附时小心去除液体。
  • 将离心管从磁力架上取下,加入900μL去蛋白液PD,抽打混匀或振荡混匀2min。
  • 将离心管放置于磁力架上静置1min,待磁珠完全吸附时小心去除液体。
  • 将离心管从磁力架上取下,加入900μL去蛋白液PD,抽打混匀或振荡混匀2min。
  • 将离心管放置于磁力架上静置1min,待磁珠完全吸附后小心去除液体。
  • 将离心管从磁力架上取下,加入900μL漂洗液PWB(使用前请确认是否已加入无水乙醇),抽打混匀或振荡混匀2min。
  • 将离心管放置于磁力架上静置1min,待磁珠完全吸附后小心去除液体。将离心管放置于磁力架上静置30sec,磁珠完全吸附后,小心吸去液体。
  • 将离心管于磁力架上,室温晾干10~15min。
    注意:乙醇残留会抑制后续的酶反应,所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥太长时间,以免难以洗脱DNA。
  • 加入30~50μL洗脱缓冲液TBC或去离子水,抽打混匀或振荡混匀,置于56℃,孵育5~10min。
  • 将离心管放置于磁力架上静置2min,待磁珠完全吸附时小心将DNA溶液转移至新的离心管,并于适当条件保存。



DNA浓度及纯度检测
  • 得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
  • DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。
  • OD260/OD280比值应为1.7~1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。

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